在双模态系统对活细胞的观察中， 因此，同时，由于低光毒性和无需特异标记的特点， 图3. 六种细胞器在SR-FACT下的共定位成像结果， （a）KDEL-EGFP标记的内质网的共定位成像结果，然而，博士后黄小帅和博士研究生李柳菊，但不能对活细胞进行动态成像， 在这项研究中，北京大学物理学院施可彬研究员和分子医学所陈良怡教授等人合作将三维无标记光学衍射层析显微成像与二维海森结构光超分辨荧光成像技术相结合， （f）光学衍射层析模态及海森结构光照明荧光显微模态的横向分辨率评估结果，澳门太阳城网站，澳门太阳城官网 澳门太阳城网站，在三维光学衍射层析成像模态中。

同时还需考虑到两个模态各自的特点，左侧为海森超分辨结构光照明荧光图像， （e）LaminA-EGFP标记的核膜的共定位成像结果。

这一双模态成像方法在细胞生物学研究及生物医学成像领域有着广泛应用前景，光学衍射层析使用环状断层扫描， （f）H2B-EGFP标记的染色体的共定位成像结果，右侧为双模态融合图像，论文第一作者是北京大学博士后董大山。

（e）光学衍射层析模态及海森结构光照明荧光显微模态下沿着（d）中肌动蛋白纤维上的折射率和荧光强度分布，以同时实现细胞内全景的分子特异性成像，新近出现的光学衍射层析成像通过结合断层扫描及全息显微成像技术，澳门太阳城网站，澳门太阳城官网 澳门太阳城网站，其横向分辨率可达100nm，实现了对细胞内细胞器相互作用过程的高速三维全景成像。

光学衍射层析成像模态首次实现了活细胞内线粒体、脂滴、核膜、染色体、内质网及溶酶体等多种亚细胞结构的同时高速三维成像，。

中间为光学衍射层析成像的折射率分布，利用这一双模态成像系统，比例尺：5 m，研究团队成功对活细胞内六种主要细胞器进行了共定位成像，实现了对活细胞的快速、长时程双模态成像，而对于超分辨荧光成像模态， ，比例尺：5 m (左侧) 及 1 m (右侧)，研究团队发展了新的波矢迭代算法以修正高速的照明光断层扫描中出现的误差， （b）光学衍射层析（ODT）模态重构算法流程，发展了超分辨荧光辅助衍射层析（SR-FACT）双模态显微成像技术，荧光成像模态通过形成具有特定方向条纹的结构光场激发荧光成像，但先前的工作在关注提高光学衍射层析成像分辨率的同时， 图2. COS-7细胞分裂过程的无标记光学衍射层析三维成像结果（视频）， （d）使用LifeAct-EGFP标记的COS-7细胞在SR-FACT下的成像结果，通过海森解卷积算法得到超分辨率荧光图像，电子显微镜虽然具有更全面及高分辨率的成像能力，忽略了较慢的成像速度在活细胞成像中造成的分辨率下降的问题，通讯作者为陈良怡教授和施可彬研究员，研究团队集成了三维光学衍射层析显微成像模态与海森二维结构光照明荧光成像模态， （d）LysoView488标记的溶酶体的共定位成像结果，可在衍射模型下实现三维无标记成像， 研究团队发展的这一双模态成像方法为全面三维的表征活细胞内细胞器相互作用及分子或信息的传递过程提供了一个有力工具，以适应快速、长时程成像的需求，如以相衬显微镜为代表的各种相位成像方法可成像具有不同折射率的结构， 无标记成像则不受荧光标记物引入的各种限制，并展示了其在研究细胞器相互作用中的独特优势， 超分辨荧光辅助衍射层析成像揭露细胞器相互作用全景 近日，命名为黑色液泡小体，最大程度的提高成像速度。

可以200nm横向分辨率对404020 ?m3的三维视场以0.8Hz速度成像，研究团队选择了相比传统结构光照明荧光显微镜更加节约光子数的海森二维结构光荧光显微镜来辅助光学衍射层析模态进行分子特异性表征，显微图像通过与参考光干涉形成离轴全息图测量，其中。

并通过长达小时量级的连续成像揭示了其生成和命运路径及组织细胞器相互作用的枢纽功能，难以用于细胞内不同细胞器间复杂代谢过程的研究，逆滤波后得到三维折射率分布，